Centre de recherche en CardioVasculaire et Nutrition (C2VN)

Pôle / Axe #1 :

Equipe de recherche :

Micronutrition humaine

Expertises :

Biodisponibilité de l’aliment à la phase postprandiale
– Facteurs qui modulent la bioaccessibilité des micronutriments lipidiques
– Biodisponibilité des micronutriments lipidiques et alimentation durable
– Mécanismes du transport intestinal des micronutriments lipidiques
– Facteurs génétiques et épigénétiques modulant la biodisponibilité et le métabolisme des micronutriments lipidiques
– Rôle de l’intestin dans la régulation du métabolisme post-prandial des lipides et des micronutriments lipidiques et dans les mécanismes physiopathologiques de la dyslipidémie athérogène du patient insulino-résistant
– Le transporteur de glucose GLUT4, homéostasie glucidique postprandiale et micronutriments lipidiques

Effets santé des micronutriments
– Micronutriments et maladies métaboliques
– Groupe métabolomique
– Evaluer l’impact des micronutriments sur la génèse de facteurs de risques cardiométaboliques
– Identifier les mécanismes moléculaires impliqués et apporter les éléments de validation chez l’homme
– Evaluer l’impact des micronutriments dans un contexte de nutrition périnatale
– Identifier les mécanismes épigénétiques et apporter les éléments de validation clinique.

Ressources :

Modèle unique de digestion intestinale : mesure de l’absorption des micronutriments (vitamines liposolubles)

Modèle de programmation périnatal (rat, souris) : différents types d’allaitement, de laits maternisés testés en période périnatale avec évaluation des conséquences sur la santé.

Plateforme AMUTICYT : Cytométrie, Immunophénotypage, Panel multicouleurs, Analyse de microparticules.
Gallios : 3 Lasers, jusqu’à 10 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Kaluza Acquisition. Fourni avec un chargeur de tubes carrousel, jusqu’à 32 échantillons.
Cytoflex LX : 5 lasers, jusqu’à 19 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Cytexpert 2.2. Fonctionne avec des tubes de 1,5 à 5 ml ou avec un chargeur de plaques (plaque à 96 puits standard ou à puits profonds, à fond plat, en U ou en V.
Astrios EQ : 4 lasers, jusqu’à 15 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel d’acquisition Summit. Instrument sous hotte d’armoire à flux d’air laminaire, installé dans un laboratoire à pression négative. Trieur thermostaté (4°C à 37°C), pour les échantillons avant et après tri. Jusqu’à 6 tris simultanés (de tubes de 1,5 à 5 ml). Les tris peuvent être générés dans des plaques, des tubes ou sur des lames. 3 modes de tri différents : Enrichir, Purifier, Tri unique (clonage). Trier avec une buse de 70 µm (pression de 60 psi) ou une buse de 100 µm (pression de 25 psi) ;

Plateforme CriBioM : Spectrométrie de masse; « omiques »; Biologie des systèmes Données massives Biomarqueurs Santé Nutrition;

Plateforme de Microscopie Électronique, Timone PMET :
– QUANTA-200 :microscope électronique à balayage (MEB)
QUANTA-200 (FEI) de 2002 avec possibilité d’utiliser le mode environnemental (échantillons légèrement hydratés, non métallisés).
– Ultracut: Ultramicrotomes Ultracut et Ultracut-E (Reichert-Jung) mécaniques.
– JEM-1400: microscope électronique à transmission (MET) JEM-1400 (JEOL) jusqu’à 120kV de 2010 avec caméra MegaView III (SIS, Olympus) de 1.3Mpx.
– HP Z6100: traceur HP Designjet Z6100 pour l’impression de poster;

Plateforme BIOMET: Spectromètre de masse haute résolution couplé à la chromatographie liquide, Spectromètre de masse couplé à la chromatographie gazeuse;

Plateforme PIVMI : Cytomètres trieurs 4, 3 et 2 voies, Cytomètres analyseurs, Microscope à épifluorescence, Microscopes portables de terrain;

Plateforme PhenoMARS :
– Cage calorimétrique Bioseb
– Roues d’activité Phymep
– Agilent AriaDX PCR
– Lecteur de plaque VictorX4 Perkn Elmer
– Analyseur hématologique Leymeted

Pôle / Axe #2 :

Equipe de recherche :

Thrombose, plaquettes et désordres vasculaires

Expertises :

Identification de nouvelles voies physiopathologiques de la thrombose, du translationnel au fondamental
– Analyse de marqueurs plasmatiques et génétiques
– Compréhension des mécanismes des maladies thrombotiques afin d’améliorer le diagnostic et les traitements
– Identification de nouvelles voies physiopathologiques de l’hémostase et de la thrombose veineuse
– Etude du rôle de protéolyses transmembranaires dans la régulation de l’hémostase et la thrombose
– Etude de la protéine CTL2 et son interaction avec le facteur de Willebrand en conditions dynamiques.

Plaquettes et pathologies vasculaires
– analyse des mécanismes moléculaires des pathologies plaquettaires d’origine génétique
– Développement d’outils d’exploration
– Etude du rôle de la protéolyse dans les fonctions plaquettaires.

Dépôts de graisse ectopique et complications vasculaires
– Analyse des liens entre obésité, diabète de type 2 et risque cardiovasculaire
– Développer de nouveaux biomarqueurs de la rétinopathie diabétique.
– Etude de la sécurité cardiovasculaire et microangiopathique des traitements antidiabétiques

Ressources :

Modèle de culture de mégacaryocytes

Plateforme AMUTICYT : Cytomètrie, Immunophénotypage, Panel multicouleurs, Analyse de microparticules.
Gallios : 3 Lasers, jusqu’à 10 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Kaluza Acquisition. Fourni avec un chargeur de tubes carrousel, jusqu’à 32 échantillons.
Cytoflex LX : 5 lasers, jusqu’à 19 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Cytexpert 2.2. Fonctionne avec des tubes de 1,5 à 5 ml ou avec un chargeur de plaques (plaque à 96 puits standard ou à puits profonds, à fond plat, en U ou en V.
Astrios EQ : 4 lasers, jusqu’à 15 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel d’acquisition Summit. Instrument sous hotte d’armoire à flux d’air laminaire, installé dans un laboratoire à pression négative. Trieur thermostaté (4°C à 37°C), pour les échantillons avant et après tri. Jusqu’à 6 tris simultanés (de tubes de 1,5 à 5 ml). Les tris peuvent être générés dans des plaques, des tubes ou sur des lames. 3 modes de tri différents : Enrichir, Purifier, Tri unique (clonage). Trier avec une buse de 70 µm (pression de 60 psi) ou une buse de 100 µm (pression de 25 psi) ;

Plateforme CriBioM : Spectrométrie de masse; « omiques »; Biologie des systèmes Données massives Biomarqueurs Santé Nutrition;

Plateforme de Microscopie Électronique, Timone PMET :
– QUANTA-200 :microscope électronique à balayage (MEB)
QUANTA-200 (FEI) de 2002 avec possibilité d’utiliser le mode environnemental (échantillons légèrement hydratés, non métallisés).
– Ultracut: Ultramicrotomes Ultracut et Ultracut-E (Reichert-Jung) mécaniques.
– JEM-1400: microscope électronique à transmission (MET) JEM-1400 (JEOL) jusqu’à 120kV de 2010 avec caméra MegaView III (SIS, Olympus) de 1.3Mpx.
– HP Z6100: traceur HP Designjet Z6100 pour l’impression de poster;

Plateforme BIOMET: Spectromètre de masse haute résolution couplé à la chromatographie liquide, Spectromètre de masse couplé à la chromatographie gazeuse;

Plateforme PIVMI : Cytomètres trieurs 4, 3 et 2 voies, Cytomètres analyseurs, Microscope à épifluorescence, Microscopes portables de terrain;

Plateforme PhenoMARS :
– Cage calorimétrique Bioseb
– Roues d’activité Phymep
– Agilent AriaDX PCR
– Lecteur de plaque VictorX4 Perkn Elmer
– Analyseur hématologique Leymeted

Pôle / Axe #3 :

Equipe de recherche :

Endothélium, Cellules Circulantes
et Pathologies Vasculaires

Expertises :

Thrombose et cancer
– déterminer, in vitro et in vivo dans des modèles pertinents, le rôle des plaquettes et des microparticules dérivées des cellules cancéreuses dans la thrombose, le développement d’une tumeur et la formation de métastases
– identifier le rôle joué par l’endothélium, les cellules musculaires lisses les plaquettes et les neutrophiles/NETs dans la signalisation cellulaire impliquée dans la formation d’un thrombus dans la micro et la macro-circulation sanguine.

Microvésicules
– étudier la relation entre la structure et la fonction des MVs, afin de comprendre leur rôle dans l’hémostase, l’inflammation et le vieillissement et d’identifier de nouveaux mécanismes conduisant à l’immuno-thrombose.
– développer des approches technologiques standardisées utilisables dans des laboratoires de transfert au patient, afin de valider leur pertinence clinique de biomarqueur dans les maladies vasculaires

Régénération vasculaire
– mécanismes impliquant les cellules progénitrices dans la régénération vasculaire et à développer des thérapies cellulaires innovantes pour les vasculopathies ischémiques.
– radiotraceurs SPECT, TEP ciblant des biomarqueurs endothéliaux.

Ressources :

Modèles de thromboses (Laser, Chlorure de Fer et DVT)

Plateforme AMUTICYT : Cytomètrie, Immunophénotypage, Panel multicouleurs, Analyse de microparticules.
Gallios : 3 Lasers, jusqu’à 10 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Kaluza Acquisition. Fourni avec un chargeur de tubes carrousel, jusqu’à 32 échantillons.
Cytoflex LX : 5 lasers, jusqu’à 19 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Cytexpert 2.2. Fonctionne avec des tubes de 1,5 à 5 ml ou avec un chargeur de plaques (plaque à 96 puits standard ou à puits profonds, à fond plat, en U ou en V.
Astrios EQ : 4 lasers, jusqu’à 15 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel d’acquisition Summit. Instrument sous hotte d’armoire à flux d’air laminaire, installé dans un laboratoire à pression négative. Trieur thermostaté (4°C à 37°C), pour les échantillons avant et après tri. Jusqu’à 6 tris simultanés (de tubes de 1,5 à 5 ml). Les tris peuvent être générés dans des plaques, des tubes ou sur des lames. 3 modes de tri différents : Enrichir, Purifier, Tri unique (clonage). Trier avec une buse de 70 µm (pression de 60 psi) ou une buse de 100 µm (pression de 25 psi) ;

Plateforme CriBioM : Spectrométrie de masse; « omiques »; Biologie des systèmes Données massives Biomarqueurs Santé Nutrition;

Plateforme de Microscopie Électronique, Timone PMET :
– QUANTA-200 :microscope électronique à balayage (MEB)
QUANTA-200 (FEI) de 2002 avec possibilité d’utiliser le mode environnemental (échantillons légèrement hydratés, non métallisés).
– Ultracut: Ultramicrotomes Ultracut et Ultracut-E (Reichert-Jung) mécaniques.
– JEM-1400: microscope électronique à transmission (MET) JEM-1400 (JEOL) jusqu’à 120kV de 2010 avec caméra MegaView III (SIS, Olympus) de 1.3Mpx.
– HP Z6100: traceur HP Designjet Z6100 pour l’impression de poster;

Plateforme BIOMET: Spectromètre de masse haute résolution couplé à la chromatographie liquide, Spectromètre de masse couplé à la chromatographie gazeuse;

Plateforme PIVMI : Cytomètres trieurs 4, 3 et 2 voies, Cytomètres analyseurs, Microscope à épifluorescence, Microscopes portables de terrain;

Plateforme PhenoMARS :
– Cage calorimétrique Bioseb
– Roues d’activité Phymep
– Agilent AriaDX PCR
– Lecteur de plaque VictorX4 Perkn Elmer
– Analyseur hématologique Leymeted

Pôle / Axe #4 :

Equipe de recherche :

Nouvelles cibles moléculaires endothéliales

Expertises :

Rôle de CD146 soluble (CD146s) comme biomarqueur potentiel dans la sclérodermie et dans le développement vasculaire placentaire et l’invasion trophoblastique, suggérant son implication dans l’implantation embryonnaire. étudier le rôle de cette molécule dans le développement de la fibrose cardiaque et rénale.

Le groupe AhR s’intéresse aux rôles des toxines urémiques indoliques, indoxyl sulfate (IS) et indolacetique acide (IAA) dans la genèse des complications cardiovasculaires de la maladie rénale chronique (MRC).

Ressources :

Modèles animaux et cellulaires : mesure AhR sur toxines
Modèles d’infarctus du myocarde ou d’insuffisance rénale chronique

Plateforme AMUTICYT : Cytomètrie, Immunophénotypage, Panel multicouleurs, Analyse de microparticules.
Gallios : 3 Lasers, jusqu’à 10 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Kaluza Acquisition. Fourni avec un chargeur de tubes carrousel, jusqu’à 32 échantillons.
Cytoflex LX : 5 lasers, jusqu’à 19 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Cytexpert 2.2. Fonctionne avec des tubes de 1,5 à 5 ml ou avec un chargeur de plaques (plaque à 96 puits standard ou à puits profonds, à fond plat, en U ou en V.
Astrios EQ : 4 lasers, jusqu’à 15 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel d’acquisition Summit. Instrument sous hotte d’armoire à flux d’air laminaire, installé dans un laboratoire à pression négative. Trieur thermostaté (4°C à 37°C), pour les échantillons avant et après tri. Jusqu’à 6 tris simultanés (de tubes de 1,5 à 5 ml). Les tris peuvent être générés dans des plaques, des tubes ou sur des lames. 3 modes de tri différents : Enrichir, Purifier, Tri unique (clonage). Trier avec une buse de 70 µm (pression de 60 psi) ou une buse de 100 µm (pression de 25 psi) ;

Plateforme CriBioM : Spectrométrie de masse; « omiques »; Biologie des systèmes Données massives Biomarqueurs Santé Nutrition;

Plateforme de Microscopie Électronique, Timone PMET :
– QUANTA-200 :microscope électronique à balayage (MEB)
QUANTA-200 (FEI) de 2002 avec possibilité d’utiliser le mode environnemental (échantillons légèrement hydratés, non métallisés).
– Ultracut: Ultramicrotomes Ultracut et Ultracut-E (Reichert-Jung) mécaniques.
– JEM-1400: microscope électronique à transmission (MET) JEM-1400 (JEOL) jusqu’à 120kV de 2010 avec caméra MegaView III (SIS, Olympus) de 1.3Mpx.
– HP Z6100: traceur HP Designjet Z6100 pour l’impression de poster;

Plateforme BIOMET: Spectromètre de masse haute résolution couplé à la chromatographie liquide, Spectromètre de masse couplé à la chromatographie gazeuse;

Plateforme PIVMI : Cytomètres trieurs 4, 3 et 2 voies, Cytomètres analyseurs, Microscope à épifluorescence, Microscopes portables de terrain;

Plateforme PhenoMARS :
– Cage calorimétrique Bioseb
– Roues d’activité Phymep
– Agilent AriaDX PCR
– Lecteur de plaque VictorX4 Perkn Elmer
– Analyseur hématologique Leymeted

Pôle / Axe #5 :

Equipe de recherche :

Système Adénosinergique, Dysoxie, Inflammation

Expertises :

Etude de :
– effets des variations de pression partielle en oxygène (Dysoxie) et à l’inflammation au niveau cellulaire, moléculaire et intégrative dans le système cardiovasculaire
– troubles du rythme (syncope eurocardiogénique et fibrillation atriale) et dans la coronaropathie : medecine personnalisé, anticorps = ADONIS
– marqueurs innovants de la souffrance myocardique, en particulier dans le cadre de la coronaropathie et de la chimiothérapie.
– « adapatation du cœur à la dysoxie : plongeur, haute altitude »
– cardio-oncologie

Nous étudions les effets de l’hypoxie, de l’ischémie ou à l’inverse de l’hyperoxie normobare ou hyperbare ainsi que de l’inflammation sur le système adénosinergique (i.e l’adénosine et ses récepteurs) sur la transduction du signal et l’expression des protéines exo faciales, dans le système cardiovasculaire. Nous nous intéressons également aux marqueurs innovants de la souffrance myocardique, en particulier dans le cadre de la coronaropathie et de la chimiothérapie.

Ressources :

Plateau technique hyperbare (caisson hyperbare)
Plateau hyperoxie, hypoxie
Hyperbarie, hypobarie
Anticorps anti A2A
Plateforme AMUTICYT : Cytomètrie, Immunophénotypage, Panel multicouleurs, Analyse de microparticules.
Gallios : 3 Lasers, jusqu’à 10 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Kaluza Acquisition. Fourni avec un chargeur de tubes carrousel, jusqu’à 32 échantillons.
Cytoflex LX : 5 lasers, jusqu’à 19 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Cytexpert 2.2. Fonctionne avec des tubes de 1,5 à 5 ml ou avec un chargeur de plaques (plaque à 96 puits standard ou à puits profonds, à fond plat, en U ou en V.
Astrios EQ : 4 lasers, jusqu’à 15 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel d’acquisition Summit. Instrument sous hotte d’armoire à flux d’air laminaire, installé dans un laboratoire à pression négative. Trieur thermostaté (4°C à 37°C), pour les échantillons avant et après tri. Jusqu’à 6 tris simultanés (de tubes de 1,5 à 5 ml). Les tris peuvent être générés dans des plaques, des tubes ou sur des lames. 3 modes de tri différents : Enrichir, Purifier, Tri unique (clonage). Trier avec une buse de 70 µm (pression de 60 psi) ou une buse de 100 µm (pression de 25 psi) ;

Plateforme CriBioM : Spectrométrie de masse; « omiques »; Biologie des systèmes Données massives Biomarqueurs Santé Nutrition;

Plateforme de Microscopie Électronique, Timone PMET :
– QUANTA-200 :microscope électronique à balayage (MEB)
QUANTA-200 (FEI) de 2002 avec possibilité d’utiliser le mode environnemental (échantillons légèrement hydratés, non métallisés).
– Ultracut: Ultramicrotomes Ultracut et Ultracut-E (Reichert-Jung) mécaniques.
– JEM-1400: microscope électronique à transmission (MET) JEM-1400 (JEOL) jusqu’à 120kV de 2010 avec caméra MegaView III (SIS, Olympus) de 1.3Mpx.
– HP Z6100: traceur HP Designjet Z6100 pour l’impression de poster;

Plateforme BIOMET: Spectromètre de masse haute résolution couplé à la chromatographie liquide, Spectromètre de masse couplé à la chromatographie gazeuse;

Plateforme PIVMI : Cytomètres trieurs 4, 3 et 2 voies, Cytomètres analyseurs, Microscope à épifluorescence, Microscopes portables de terrain;

Plateforme PhenoMARS :
– Cage calorimétrique Bioseb
– Roues d’activité Phymep
– Agilent AriaDX PCR
– Lecteur de plaque VictorX4 Perkn Elmer
– Analyseur hématologique Leymeted

Pôle / Axe #6 :

Equipe de recherche :

Epithélium bronchique dans les maladies respiratoires chroniques sévères

Expertises :

• Caractérisation des Maladies respiratoires chroniques fréquentes et rôle de l’épithélium bronchique
• Développement des marqueurs biologiques originaux et identification des nouvelles cibles thérapeutiques
• La prévention et la résolution de l’inflammation bronchique orchestrée par l’épithélium notamment dans le cadre des exacerbations viro-induites,
• La compréhension des réseaux de communications entre l’épithélium et les cellules inflammatoires exemple les éosinophiles, les cellules NK ou encore les plaquettes.
• L’appréhension mécanistique et la reprogrammation de l’épithélium bronchique malade,
• Développement de traitements innovants grâce à une recherche translationnelle à partir des cohortes et des réseaux nationaux et internationaux.

Ressources :

• Modèle original de reconstitution in vitro d’épithélium bronchique pseudostratifié complètement différencié en interface air-liquide obtenu directement à partir des prélèvements issus de patients et qui maintient les caractéristiques de départ.

Plateforme AMUTICYT : Cytomètrie, Immunophénotypage, Panel multicouleurs, Analyse de microparticules.
Gallios : 3 Lasers, jusqu’à 10 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Kaluza Acquisition. Fourni avec un chargeur de tubes carrousel, jusqu’à 32 échantillons.
Cytoflex LX : 5 lasers, jusqu’à 19 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel Cytexpert 2.2. Fonctionne avec des tubes de 1,5 à 5 ml ou avec un chargeur de plaques (plaque à 96 puits standard ou à puits profonds, à fond plat, en U ou en V.
Astrios EQ : 4 lasers, jusqu’à 15 fluorescences simultanées, fonctionnant avec le logiciel d’acquisition Summit. Instrument sous hotte d’armoire à flux d’air laminaire, installé dans un laboratoire à pression négative. Trieur thermostaté (4°C à 37°C), pour les échantillons avant et après tri. Jusqu’à 6 tris simultanés (de tubes de 1,5 à 5 ml). Les tris peuvent être générés dans des plaques, des tubes ou sur des lames. 3 modes de tri différents : Enrichir, Purifier, Tri unique (clonage). Trier avec une buse de 70 µm (pression de 60 psi) ou une buse de 100 µm (pression de 25 psi) ;

Plateforme CriBioM : Spectrométrie de masse; « omiques »; Biologie des systèmes Données massives Biomarqueurs Santé Nutrition;

Plateforme de Microscopie Électronique, Timone PMET :
– QUANTA-200 :microscope électronique à balayage (MEB)
QUANTA-200 (FEI) de 2002 avec possibilité d’utiliser le mode environnemental (échantillons légèrement hydratés, non métallisés).
– Ultracut: Ultramicrotomes Ultracut et Ultracut-E (Reichert-Jung) mécaniques.
– JEM-1400: microscope électronique à transmission (MET) JEM-1400 (JEOL) jusqu’à 120kV de 2010 avec caméra MegaView III (SIS, Olympus) de 1.3Mpx.
– HP Z6100: traceur HP Designjet Z6100 pour l’impression de poster;

Plateforme BIOMET: Spectromètre de masse haute résolution couplé à la chromatographie liquide, Spectromètre de masse couplé à la chromatographie gazeuse;

Plateforme PIVMI : Cytomètres trieurs 4, 3 et 2 voies, Cytomètres analyseurs, Microscope à épifluorescence, Microscopes portables de terrain;

Plateforme PhenoMARS :
– Cage calorimétrique Bioseb
– Roues d’activité Phymep
– Agilent AriaDX PCR
– Lecteur de plaque VictorX4 Perkn Elmer
– Analyseur hématologique Leymeted